2.4 萃取試劑/洗脫劑種類對提取梔子油中藏紅花酸的栀油中藏影響

乙酸為萃取試劑時，萃取得到的红花萃取劑相在下層，油相在上層；乙腈和甲醇為萃取試劑時，及其究萃取劑相在上層，法测油相在下層；乙醇為萃取試劑時，定研溶液不分層且較混濁。栀油中藏異丙醇為萃取試劑時，红花溶液清澈且不分層。及其究

因此，法测乙醇和異丙醇作為萃取試劑的定研樣品不能進行液相分析，對乙酸、栀油中藏乙腈、红花甲醇為萃取試劑處理的及其究樣品進行液相檢測。結果如圖4所示，法测甲醇為萃取試劑得到的定研藏紅花酸濃度平均值為69.65 μg/g，乙腈為萃取試劑得到的藏紅花酸濃度平均值為65.52 μg/g，乙酸為萃取試劑得到的藏紅花酸濃度平均值為62.79 μg/g。

因此甲醇的萃取能力最強，為液液萃取的最優萃取試劑，亦即固相萃取中的最優洗脫劑。

2.5 萃取試劑/洗脫劑濃度對提取梔子油中藏紅花酸影響

以70%甲醇為萃取試劑得到的樣品出現部分乳化現象，樣品較渾濁，透光度低，不能進行液相分析。隨著甲醇濃度升高，溶液逐漸清晰，透光度變好，90%和100%甲醇萃取得到的樣品都較清晰。如圖5所示，100%甲醇的萃取能力最強，為液液萃取的最優萃取試劑濃度，亦即固相萃取中的最優洗脫劑濃度。

2.6 溫度對提取梔子油中藏紅花酸的影響（超聲輔助液液萃取）

在上述篩選出的最優條件下（以DMF為溶油試劑，料液比0.5 g油：5 mL DMF，100%甲醇為萃取試劑），進一步對可能的影響因素，即超聲溫度進行優化。結果如圖6所示，藏紅花酸含量隨溫度的增加呈現出先下降後上升的變化趨勢，然而，總體上，改變溫度對提取藏紅花酸的影響不大。因此，從節約能耗、簡化實驗操作、提高檢測效率角度考慮，超聲輔助液液萃取可在常溫下進行。

2.7 時間對提取梔子油中藏紅花酸的影響（超聲輔助液液萃取）

在上述篩選出的最優超聲輔助液液萃取條件下（以DMF為溶油試劑，料液比0.5 g油：5 mL DMF，100%甲醇為萃取試劑），進一步對可能的另一個影響因素，即超聲時間進行優化。實驗溫度為30 ℃，結果如圖7所示，總體上，改變時間對提取藏紅花酸的影響都不大。因此，從節約時間成本、提高檢測效率角度考慮，超聲輔助液液萃取可在2 min條件下進行。

2.8 萃取次數對提取梔子油中藏紅花酸的影響（超聲輔助液液萃取）

在上述篩選出的最優超聲輔助液液萃取（以DMF為溶油試劑，料液比0.5 g油：5 mL DMF，100%甲醇為萃取試劑，常溫，超聲萃取2 min）條件下，進一步對可能影響藏紅花酸提取效果的因素，即萃取次數進行優化。如圖8所示，隨著萃取次數的增多，藏紅花酸含量僅略微增加。出於提高效率、節約成本和時間角度考慮，萃取1次為最優條件。

綜上所述：將2種前處理方法（超聲輔助液液萃取和固相萃取）的最優條件及最優條件下獲得的的藏紅花酸含量進行比較，結果如表1所示，超聲輔助液液萃取優於固相萃取。因此，超聲輔助液液萃取為篩選出的最優前處理方法，9組平行樣本檢測到的梔子油中藏紅花酸含量的平均值為69.65 μg/g（RSD=4.45%）。

2.9 加標回收率

選擇超聲輔助液液萃取為最終前處理手段，並在上述最優實驗條件下，進行加標回收實驗。分別吸取1.2.1配置的12 μg/mL藏紅花酸標準儲備液100、200、300 μL，其對應的濃度分別為0.12、0.24、0.36 μg/mL。每一添加水平的樣品數為3個。先測定樣品原香菜籽油中藏紅花酸的本底含量，再測定加標後藏紅花酸的含量，計算加標回收率。得到平均加標回收率為86.61%，平均RSD=1.16%。表明該方法具有較好的穩定性，可實現梔子油中藏紅花酸的準確定量。

3 結論

藏紅花酸作為梔子油中的重要微量營養成分，很可能成為評價梔子油品質的一個重要指標。因此，文章對梔子油中藏紅花酸的提取及HPLC檢測方法進行了係統研究。首先利用HPLC建立藏紅花酸的標準曲線，回歸方程y=115356x—26489，R2=0.9996，線性關係良好，檢出限低至0.21 μg/mL，定量限低至0.7 μg/mL。然後篩選得到超聲輔助液液萃取為最優提取方式；選用DMF為溶油試劑，料液比0.5 g油：5 mL DMF，100%甲醇為萃取試劑，室溫超聲2 min，萃取1次，9組平行樣本檢測得到藏紅花酸的平均值為（69.65±3.17）μg/g（RSD=4.45%），平均加標回收率為86.61%（平均RSD%=1.16%）。

該方法操作簡單、耗時少、耗能低、準確性高、穩定性好，可以實現梔子油中藏紅花酸的快速、準確定量，為從梔子中提取藏紅花酸方麵的研究提供了方法學基礎，對梔子油的功能性開發及應用具有重要價值和意義。

聲明：本文所用圖片、文字來源《食品科技》，版權歸原作者所有。如涉及作品內容、版權等問題，請與本網聯係刪除

相關鏈接：甲醇，藏紅花，液液萃取